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发布日期:2024/10/18 14:36:00

       酶联免疫吸附试验(Enzyme Linked Immunosorbent Assay,ELISA)是目前应用最广泛的免疫学检测技术,是将抗原-抗体反应的特异性与酶催化作用的高效性相结合,通过酶作用于底物后的显色反应判定结果。一般用酶标测定仪测定吸光度(O.D.值)来反映抗原或抗体含量,灵敏度可达ng/ml水平甚至pg/ml水平。ELISA是一种快速、灵敏、准确可靠的定量分析方法。

       然而,用于ELISA检测的常见样本类型包括血液(血清、血浆),组织匀浆、细胞裂解液、细胞培养上清等;特殊样本类型包括痰液、肺泡灌洗液、红细胞裂解液、唾液、乳汁、腹水等。样本的处理对于ELISA实验的成功有着举足轻重的作用。这些样本的收集时间、处理方法和保存方式都会影响ELISA实验的结果。下面我们为大家提供一些在ELISA检测中碰到特殊样本的处理方式,以供参考。

一、常见样本类型的处理方法推荐:

Ⅰ、血液样本

血液采取后应尽快进行处理,使血清(浆)从与血细胞接触的全血中分离出来。

血清与血浆的区别:

血清是血液凝固后缺少纤维蛋原的血浆,故血浆中除尚含有纤维蛋白原和抗凝剂外,其他成份均等同于血清。

选择血清还是血浆样本?

由于血清中缺乏很多的凝血因子,但有一些凝血产物,如果是测凝血相关靶分子建议选择血浆样本;同时血浆中有纤维蛋白原,如果纤维蛋白原对待检测指标有影响,建议选择血清样本。大多数情况下二者均可以选择。

①血清:将收集于血清分离管中的全血标本在室温放置2小时或4℃过夜,然后1,000×g离心20分钟,取上清即可,将上清置于-20℃或-80℃保存,避免反复冻融。 

②血浆:用EDTA或肝素作为抗凝剂采集标本,并将标本在采集后的30分钟内于2-8℃ 1,000×g离心15分钟,取上清即可检测,或将上清置于-20℃或-80℃保存,避免反复冻融。

Ⅱ、组织匀浆

不同类型的组织制备匀浆的方法会有所不同

①取适量组织块,在预冷PBS(0.01mol/L, pH=7.0-7.2)中清洗去除血液,匀浆前先称重。

②将组织切成小块,均匀的放入放置在冰上的装有新鲜裂解缓冲液(货号IS007,应依据目标蛋白的亚细胞定位选择不同类型的缓冲液)的玻璃均质器中(微小的组织也要如此)。(质量体积比=1:20-1:50,例如:1mL裂解缓冲液中加入20-50mg组织样本。)

③将得到的悬浊液经过超声处理至澄清。

④将制备好的匀浆液10,000×g离心5分钟,弃沉淀,上清即可用于检测或置于-20℃下保存。

Ⅲ、细胞裂解液

在分析试验之前,细胞需利用以下方法处理:

①贴壁细胞应该用冷PBS轻轻清洗,然后用胰蛋白酶消化,于1,000×g 离心5分钟后收集。(悬浮细胞可通过离心直接收集)。

②将收集到的细胞用冷PBS洗3次;

③将细胞用新鲜裂解缓冲液重悬至密度为107个细胞/毫升,如果需要,细胞可以进行超声波处理至溶液澄清。

④将标本于2-8℃ 1,500×g离心10分钟,弃沉淀,上清即可用于检测或置于-20℃下保存。

Ⅳ、细胞培养上清

请1,000×g离心20分钟,取上清即可检测,或将上清置于-20℃或-80℃保存,避免反复冻融。

Ⅴ、粪便

称取约100mg(80-120mg)粪便,加入5ml PBS,用涡旋器振荡40秒。然后匀浆粪便溶液25-30分钟。取1ml匀浆物于新的EP管中,10,000rpm离心20分钟。吸取上清液至另一个新的EP管中,即可检测,或将上清置于-20℃ 或-80℃ 保存,但应避免反复冻融。

Ⅵ、尿液

请收集清晨第一次尿液(中段尿),或24小时尿液,2,000×g离心15分钟后收集上清,并将标本保存于-20℃,且应避免反复冻融。

Ⅶ、脑脊液

请离心后收集上清,并将标本保存于-20℃,且应避免反复冻融。

二、特殊样本类型的处理方法推荐:

Ⅰ、痰液

选择痰液中较为粘稠部分称重,加两倍于痰量的0.1%DTT(二硫苏糖醇)37℃恒温水浴振荡5分钟,再加入两倍于痰量的PBS缓冲液继续振荡15-20分钟,150目的金属丝网过滤,1,000×g离心10分钟吸取上清液-20℃或-80℃冷冻保存。

Ⅱ、肺泡灌洗液

1,000×g离心20分钟,取上清即可检测,或将上清置于-20℃或-80℃保存,但应避免反复冻融。

Ⅲ、唾液

用唾液样本采集管收集样本,然后于2-8℃ 1,000×g离心15分钟,取上清即可检测,或分装后于-20℃或-80℃保存。避免反复冻融。

注意:唾液一般饭后半小时内不易采集,因为刚进食的唾液中富含唾液淀粉酶,最好空腹时段采集。

Ⅳ、红细胞裂解液:

     ①将全血于1,000×g离心20分钟,弃上清收集细胞。

②将收集的细胞用预冷的PBS(pH 7.0-7.2)洗涤三次。

③用预冷的PBS重悬细胞,放于-20℃冷冻。然后融化细胞,轻轻混合。反复冻融三次。

④于2-8℃ 5,000×g离心10分钟,除去细胞碎片。

⑤取上清即可检测,或将上清置于-20℃或-80℃保存,尽量避免反复冻融。

Ⅴ、乳汁

将标本在2-8℃ 10,000×g离心15分钟,收集水样成份,每次离心两次以上,重复3次即可检测,或将上清置于-20℃或-80℃保存,避免反复冻融。

Ⅵ、精浆

精液标本收集于无菌容器中,室温或37℃水浴箱中液化。待精液完全液化后,将精液 4,000 rpm离心10 分钟分离精浆,即可做ELISA。

Ⅶ、胸腹水

为防止标本采集时出现凝块、细胞变性、细菌破坏自溶等,常规及细胞学检查胸腹水宜用EDTA-K2 抗凝收集,生化标本宜用肝素抗凝收集。收集后即刻离心,2,500r/分钟离心5分钟。取上清即可用于检测,或将上清置于-20℃或-80℃保存。

 

除了动物来源的样本,还有植物样本在检测之前也需要进行相应的处理。在这里我们选取了2种植物样本收集处理方法,以供参考:

Ⅰ、植物样本中提取化学分子

①取新鲜材料或贮存材料(用100%甲醇固定,放置-10℃冰箱中至待测时)1g,剪碎,加入6ml预冷的80%甲醇溶液,匀浆5分钟.

②匀浆液在4摄氏度下振荡(或搅拌)24h,过滤。

③残渣再用2ml甲醇液振荡1h。反复二次,滤液混合。

④ 将滤液在旋转蒸发器上干燥减压蒸发(36~38℃)至2ml。

⑤再加入1ml石油醚提取部分色素,弃掉石油醚层,取下层甲醇液层。

⑥继续减质浓缩至水溶液。在此水溶液中含有IAA、ABA、GA和CTK等。

Ⅱ、植物样本中蛋白质提取方法

     ①根据样品重量(1g样品加入3.5ml提取液,可根据材料不同适当调整加入量),准备提取液放在冰上。

     ②把样品放在研钵中用液氮研磨,研磨后加入提取液中在冰上静置(3-4小时)。

     ③用离心机离心8,000rpm40分钟(4℃)或11100rpm20分钟(4℃)

     ④提取上清夜,样品制备完成。

 

样本的处理是实验成功的第一步。处理样本的过程就是收集目标蛋白的过程,由于蛋白容易变性降解,处理过程应尽量温和。样本处理之后的保存也非常重要,尤其注意不要反复冻融,样本处理之后可分装密封保存, 4℃保存应小于1周,-20℃不应超过1个月,-80℃不应超过2个月。在标本使用前应缓慢均衡至室温,不应加热使之融解。

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